大、小鼠的麻醉与麻醉状态监测标准操作规程
1 目的
规范大、小鼠麻醉与镇痛的操作程序，减少对大、小鼠的伤害和刺激，防止操作不当影响实验结果的准确性或造成动物死亡。规范实验大、小鼠麻醉过程中的监护程序，保证动物生理活动保持在正常范围内；同时保证动物达到所需的麻醉深度，保证动物的安全，避免动物遭受痛苦。
2 适用范围
适用于大、小鼠麻醉与麻醉状态检测时。
3 内容
3.1 麻醉方法
3.1.1吸入麻醉：用一个大棉球蘸取乙醚等挥发性麻醉药，然后迅速放入密闭的蒸发容器内，让其挥发，随后把实验大、小鼠放入容器内，隔3-5分钟后，视动物麻醉深度选择实验时间。随时准备一个蘸有麻醉药的棉球以备加强麻醉。
3.1.2腹腔麻醉：腹部注射部位用75%乙醇消毒，操作详见“SOP-Lac034大、小鼠腹腔注射给药标准操作规程”。
3.1.3静脉注射麻醉：保定好大、小鼠，术部消毒，右手持注射器，使针头与静脉平行，回抽有血则可推入麻醉药。注射完后用消毒棉球止血。
3.2 麻醉分期
从动物清醒到完全的麻醉是一个连续的过程，而不是一系列无关联的步骤。反射、体位的改变、呼吸频率和深度、心率、血压的改变和其它对疼痛的刺激反应等都是麻醉监控的指标。麻醉通常被分为四个期：
3.2.1诱导期：此期动物是清醒的，处于一种轻度痛感丧失和安静状态，反应轻度延迟。
3.2.2兴奋期：动物意识逐渐丧失，反射活动和肌肉运动增强。瞳孔开始放大，泪腺和粘液分泌增加，眼睛呈现出不协调的运动。
3.2.3手术期：呼吸系统频率降低，深度增加。眼睑和角膜反身消失，肌肉紧张和反射应答减低，对处科和其它刺激无反应，最适合进行手术。
3.2.4缺氧期：此时生命中枢被抑制，以致呼吸和心跳减慢甚至停止；瞳孔放大，光反应消失；1-5分钟内可能死亡。
3.3 麻醉状态监测
大部分实验要求麻醉达到手术期，按照推荐药品量通常能获得预期效果，但是当不同的麻醉剂联合使用时，各种反应有相当大的变化。需要操作人员使用以下方法确定动物是否达到足够的麻醉。
3.3.1眼反射：眼球震颤表示麻醉过浅，麻醉兴奋期瞳孔放大，然后随着麻醉深度缩小，麻醉过量瞳孔极度放大。
3.3.2翻正反射：当动物处于仰卧位时，通常试图翻转至俯卧位，在麻醉状态下动物会保持仰卧位。
3.3.3眼睑反射：当触及眼内、外眦时，动物会眨眼，在手术麻醉阶段这种反射消失。
3.3.4踏板反射：当手指或足趾间皮肤被掐痛时，动物的腿产生弯曲并伸直的反射，这些反射在麻醉期间消失。
3.3.5吞咽反射：在没有麻醉的情况下，牵拉舌头或挤压喉将引起动物吞咽，麻醉时则不会。
3.3.6掐尾反射：当麻醉不是很深时，用指甲或止血钳掐、夹动物的尾巴会导致尾巴的轻弹，偶尔发声。
3.4 注意事项
3.4.1静脉注射必须缓慢，并注意观察动物反射活动状态，适时停止注射。
3.4.2麻醉药用量宜低不宜高。过高容易麻醉过度，副作用加大，稍微可以加强麻醉。
3.4.3麻醉过深时，最易观察到的是呼吸极慢甚至停止，但仍有心跳。可给予苏醒剂以促恢复。常用的苏醒剂有咖啡因、尼可刹米和山梗茶碱等。心跳停止时应进行心脏按摩，注射温热生理盐水和肾上腺素。
3.4.4实验过程中如麻醉过浅，可临时补充麻醉药，但一次注射剂量不宜超过总量的1/5。
3.4.5动物在麻醉期体温容易下降，要注意保温；在寒冷冬季做慢性实验时，麻醉剂在注射前要加热至动物体温水平。
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