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幼年动物麻醉

​​通过充分的准备和对幼年兽医患宠独特的生理和解剖差异的了解,麻醉医师可以为这些患宠提供极好的护理。

兽医新生儿和幼年患宠对兽医麻醉医师提出了一套独特的围麻醉期理挑战。患宠的生理系统不成熟,麻醉和镇痛药物的处理方式改变,再加上体积小,这使得静脉导管放置和气管内(ET)插管有潜在的困难。就连关于新生儿和幼年的兽医定义的一致性也是一个挑战。

根据美国动物医院协会(AAHA)对犬和猫的生命阶段指南,新生儿阶段从出生到断奶(约4周大),幼年阶段一般从断奶到性成熟(约6个月大,取决于品种和物种)

这类患宠面临的临床和治疗挑战使得兽医技术人员必须了解这些患宠独特的解剖、生理和药理学差异,以帮助制定和提供最合适的麻醉方案。

生理学

新生儿和幼年麻醉患宠在大多数生理系统中的储备能力有限。在从宫内生理学向成年生理学过渡的过程中,心肺系统在出生时经历了快速而剧烈的变化,以维持生命。新生儿和幼年患宠高度依赖心率来维持心输出量和血压。它们的收缩组织功能较弱,心脏储备有限,心室顺应性较低,因此增加每搏输出 量的能力降低。交感神经系统发育不全,这些患宠血管舒缩控制差,压力感受器反射减少,这使他们不能耐受失血和维持血压。因此,心动过缓可能会严重影响心输出量,进而影响血压。虽然它们可能对液体负荷反应迅速,但幼年动物对液体负荷的耐受性不如成年犬猫。

幼年患宠的肺储备也是有限的。与成年相比,舌头较大、气道软骨硬度较低等解剖学差异易使幼年患宠易患上气道阻塞。此外,胸腔更柔韧,肋间肌肉更弱,肺部顺应性更差,呼吸的总功比成年大,因此容易出现气道塌陷和呼吸疲劳。与成年相比,新生儿的吸气储备量减少,每分钟吸气量的增加是通过增加呼吸频率来实现的。

功能残存能力降低,呼吸化学感受器不成熟,需氧量减少,这些都使幼年动物在麻醉围术期面临快速脱饱和和低氧血症的风险。幼犬和幼猫对低氧血症和呼吸疲劳的敏感性要求在整个麻醉期内进行氧气补充,并强调了仔细监测呼吸系统的重要性,以便在需要时可以迅速开始间歇性正压通气。

在非常幼年的患宠中,肾脏和肝脏系统是不成熟的。镇静和麻醉的主要考虑因素之一是药物的代谢、生物转化和排泄。可能会观察到效果增强和作用时间延长,麻醉医师可能需要相应地调整剂量和用药间隔。幼年患宠容易发生低血糖,因为糖原储存很少和糖异生作用差。在麻醉过程中监测血糖和给予含糖液体可能是有益的。与成年的犬猫相比,肾脏功能也降低了,这使得对液体过载和低血压的耐受性降低。

幼年患宠体温调节功能差,他们的体表面积相对较大,脂肪储备极少,这使得他们极易受到低温的影响。此外,大多数麻醉剂影响体温调节中枢,可能导致体温过低。这会产生许多有害影响,包括代谢率降低、感染易感性增加、心肌抑制、呼吸抑制和药物代谢延迟。由于代谢率的降低,低温显著降低了吸入药物的最低肺泡浓度(MAC)。

麻醉前准备

一个完整的身体检查是任何动物进行镇静或麻醉前的基础。根据检查过程中的观察结果,麻醉医师将能够制定适当的麻醉计划。

因为幼年患宠肝脏中的糖原储存较少,所以应该缩短禁食时间。未断奶的幼犬和幼猫不应禁食,吃固体食物的6周以上的患宠在全身麻醉前最多只需禁食3-4小时,不需要禁水。这些患宠长时间禁食可能会导致低血糖和脱水,并使他们容易体温过低。

最低限度的实验室评估应包括红细胞压积、总蛋白和血糖。如有必要,应进一步评估患宠的生化和血液状况。如有可能,麻醉前应纠正任何液体不足或电解质失衡。如果可能,避免重复采血,这可能会导致非常小的患宠的血容量减少。

设备

当计划对幼年患宠进行麻醉时,必须提供正确的设备。选择合适尺寸的ET管,以及带有良好光源和适当尺寸的喉镜。对于非常小的患宠,最好使用无气囊的ET管,以最大限度地增大气道直径并降低呼吸阻力。如果使用带有气囊的ET管,必须小心不要过度充气,因为气管组织非常脆弱。使用喉罩呼吸道已在小猫中报道;然而,与ET管相比,下食管反流的发生率更高。

由于患宠体型和潮气量较小,器械死腔的增加是值得关注的问题。死腔增加的原因包括ET管过长和尺寸不当,Y形三通接头和二氧化碳检测仪接头。图1显示的是一例由于器械死腔增加而重复呼吸的二氧化碳波形图。因此,应该提供氧气和带有合适大小的Y形管和气囊的呼吸回路,以辅助患宠的通气。如果使用吸入麻醉剂,非重复呼吸系统对大多数患宠来说可能是更好的选择,以减少呼吸阻力,并促进麻醉浓度的更快变化。不幸的是,这些回路所需的新鲜气体流速(呼吸分钟容积的2-3倍)可能使患宠容易出现体温过低。由于这些患宠的低饱和度风险很高,在麻醉诱导前使用适当大小的面罩进行预氧的重要性怎么强调都不为过。

图1.由于器械死腔增加,导致吸入的二氧化碳增加图1.由于器械死腔增加,导致吸入的二氧化碳增加

在围麻醉期监测各种器官系统的设备应该准备好并使用,直到患宠恢复并能够维持正常的体内平衡。为降低意外液体过载的风险,建议使用静脉输液设备,如输液泵和注射泵。

对所有患宠来说,准确的体重是至关重要的,特别是对小患宠来说,过量的液体或药物可能会导致严重的后果。对于非常小的患宠,建议使用小克秤,以克为单位给出准确的重量(图2)。

麻醉前用药

新生儿很少麻醉前用药;然而,除了非常虚弱或生病的患宠外,麻醉前用药对幼年的犬猫都是有益的。使用平衡的药物组合可以缓解压力,并显著减少随后所需的诱导麻醉剂和维持麻醉剂的剂量量。推荐使用短效和可逆的药物。

药物的选择和剂量取决于患宠的年龄和生理状况。在非常幼年的患宠中,血脑屏障的通透性更强,中枢神经系统对药物的反应可能会被放大。与幼年和成年动物相比,新生儿患宠药物吸收、代谢、分布和排泄的改变也应考虑在内。无论选择哪种药物,都必须注意药物剂量,因为这部分患宠对绝对或相对过量的耐受性也较差。

儿科患宠麻醉前用药的4大类药物是阿片类药物、苯二氮卓类药物、抗胆碱药和镇静剂(表1)。这些药物可以单独使用,也可以联合使用。 

阿片类

一般情况下,阿片类药物对心脏收缩力的影响很小,但可能会产生迷走神经介导的心率减慢。因此,抗胆碱能药物通常与阿片类药物联合使用。µ激动剂(芬太尼、吗啡、美沙酮、氢吗啡酮和羟吗啡酮)的镇痛效果最好,但比部分µ激动剂(丁丙诺啡)和κ激动剂/µ拮抗剂(布托啡诺)对心血管和呼吸的抑制更大。后一种药物只能提供轻度到中度的镇痛作用,但根据手术过程和镇痛要求,可能是更合适的选择。如果出现不良或长时间的药物效应,可用纳洛酮等特异性拮抗剂逆转全µ激动剂。

苯二氮卓类

苯二氮卓类药物在健康成年患宠中通常不能提供可靠的镇静作用,但在幼年患宠中往往相当有效。咪达唑仑和地西泮对心血管的抑制作用很小,并能使肌肉得到良好的放松。苯二氮卓类药物不能提供任何镇痛作用,因此它们最好与阿片类药物联合使用。如果需要,苯二氮卓类药物可用氟马西尼逆转。

抗胆碱类

抗胆碱药常用于新生儿和幼年患宠。因为幼年患宠的心输出量取决于心率,应注意保持心率。在迷走神经张力高的患宠或可能刺激迷走神经反射的手术中,也可能需要使用阿托品或格隆溴铵。

镇静剂

乙酰丙嗪。尽管吩噻嗪类药物乙酰丙嗪是兽医术前用药中最常用的药物之一,但在非常幼年的患宠中应尽量避免使用。由于血管扩张,它可能导致低血压和热量损失,幼年患宠对这些影响的补偿能力较差。

α2-肾上腺能受体激动剂。由于α2激动剂可能引起明显的血管收缩和心动过缓,因此最好避免在新生儿和幼年的犬猫中使用。这对幼年患宠尤其重要,因为他们的心输出量依赖于心率。

麻醉诱导与维持

麻醉诱导是通过注射药物或使用吸入剂来实现的。建议麻醉诱导前使用面罩用100%氧气预吸氧至少3分钟。注射药物的好处是最大限度地减少患宠的压力并造成意识的迅速丧失,这有利于快速控制气道。然而,必须要有静脉通路,这对意识清醒的幼年患宠来说可能是具有挑战性的。

注射药物

常用作诱导麻醉剂的注射药物有丙泊酚、氯胺酮/地西泮、依托咪酯和阿法沙龙(表1)。所有注射麻醉剂都有副作用,在选择最合适的药物时需要加以考虑。

所有的注射药物都需要一定程度的肝脏代谢和肾脏清除。当用于肾功能和肝功能未成熟的患宠时,作用和恢复的时间可能会延长。丙泊酚可能是个例外,因为它有一定程度的肝外代谢。

注射诱导麻醉剂的准确剂量很重要。用相容的稀释剂稀释特定药物的浓度以辅助用药通常是有益的。

所有的麻醉剂都有可能产生呼吸抑制,因此麻醉医师需要能够快速控制气道,提供氧气,并在必要时进行通气。

丙泊酚

丙泊酚是一种短效催眠剂,可用于通过递增剂量或输注来诱导和维持麻醉。它可以引起剂量依赖性的心动过缓、血管扩张和呼吸抑制。丙泊酚是高度脂溶性的,需要肝脏代谢,但也存在一些肝外代谢。

氯胺酮

氯胺酮是一种解离性麻醉剂,常与苯二氮卓合用作为诱导剂。氯胺酮起效快,对心血管的抑制作用小,镇痛时间短。由于交感神经系统受到刺激,氯胺酮常使血压和心输出量短暂升高。

依托咪酯

依托咪酯是一种短效非巴比妥类静脉麻醉剂。与其他诱导药物相比,它引起的心血管副作用最小,也不太可能引起血压的显著下降。依托咪酯产生轻微的呼吸抑制。

阿法沙龙

阿法沙龙是一种神经固醇类药物,它与γ-氨基丁酸A型受体相互作用,产生麻醉和肌肉松弛。在临床剂量下,它具有良好的心血管稳定性和最小的呼吸抑制。阿法沙龙被发现适用于12周以下的犬猫作为麻醉诱导剂。据报道,与阿法沙龙/异氟烷组相比,12周以下的猫在单独使用阿法沙龙维持麻醉时能更好地维持心率。由于心输出量依赖于心率,使用阿法沙龙维持麻醉对幼年患宠可能有特殊的价值。

吸入麻醉剂

所有临床使用的吸入剂都会产生一定程度的剂量相关的心血管和呼吸抑制。异氟烷和七氟烷有时用于静脉或骨内无法进入的麻醉诱导。七氟烷在血液中的溶解度比异氟烷低,因此吸收(诱导)和消除(恢复)更快。吸入诱导时应使用小的、贴合良好的、死腔最小的面罩(图3)。用温暖的毛巾包裹患宠可以减轻束缚的压力。新生儿吸入麻醉剂较快,治疗指标较窄,应注意不能过量给药。

图3.使用小的、贴合良好的、死腔最小的面罩进行预吸氧和/或吸入麻醉剂诱导图3.使用小的、贴合良好的、死腔最小的面罩进行预吸氧和/或吸入麻醉剂诱导

局部麻醉技术

局部麻醉技术可用于提供镇痛和麻醉,减少维持性麻醉剂的用量。由于兽医新生儿和幼年患宠的体型较小,存在给患宠过量用药并导致中毒的可能性。因此,局麻药的正确剂量(每公斤体重的药物质量)应该仔细计算、检查和记录。

支持和监测

监测的目的是提供信息,帮助麻醉医师评估患宠的生理状态,并为每个患宠提供最合适的麻醉/镇痛方案。在制定计划时,麻醉医师应该确定在麻醉下可能发生的任何潜在的干扰,如低血压和体温过低。然后,麻醉医师可以根据患宠的体征和当前健康状况,制定避免这些生理变化的最佳方法。

在今天的兽医学中,我们有许多电子监测设备,但所有的监测设备都有局限性,不应该取代熟练的、知识渊博的技术人员。在监视时,一个测量提供了一个了解动态情况的窗口,而重复的测量提供了一个更好的动态图像指示。趋势比单一的数据更有意义。

组织灌注可以通过脉搏质量、毛细血管再充盈时间和粘膜颜色进行主观评估。心率和节律可以用听诊器、食道听诊器或心电图来评估。

血压可以通过动脉导管和传感器进行有创监测,但对于较小的患宠,这在技术上是有挑战性的。使用多普勒或示波监护仪进行无创血压测量(NIBP)。NIBP测量可能并不总是准确预测血压,任何治疗决策都不应基于一次测量。然而,这些监测仪对于监测一般血压趋势是有用的。必须注意选择正确大小的袖带。袖带的宽度应该大约是四肢周长的40%。袖口尺寸不正确会导致读数过高或过低。

脉搏血氧饱和度可以显示循环和氧合是否充足。脉搏血氧仪显示存在搏动性血流。外周血管收缩、脉搏振幅降低或心律失常都可能影响信号质量。

呼吸功能可以通过呼吸频率和呼吸深度来主观评估。呼末二氧化碳可以测量呼吸气体中的二氧化碳含量,因此是反映呼吸功能充分性的良好指标。幼年患宠潮气量小以及高新鲜气体流速的稀释效应可能会影响测量的准确性。用于呼末二氧化碳的适配器通常连接在ET管和呼吸回路之间,因此可能在很大程度上造成设备腔。这可以通过将针连接到采样管并将其直接插入ET管(旁流采样)来解决(图4)。

图4.为了消除主流适配器的机械死腔,(A)可以将针连接到侧流采样管并直接插入气管内管的管腔,或者(B)可以使用带采样端口的气管插管适配器。图4.为了消除主流适配器的机械死腔,(A)可以将针连接到侧流采样管并直接插入气管内管的管腔,或者(B)可以使用带采样端口的气管插管适配器。

如果需要通气,必须小心,因为这些患宠潮气量小,会增加过度通气造成气压伤的风险。气道压力不应超过15~20 cm H2O(开放胸腔为10~15 cm H2O)。

液体疗法有利于提供血流动力学支持和弥补无意识的损失;但是,建议使用输液泵或注射泵来提供准确的液体量,以降低液体超载的风险。液体速率不应超过10mL/kg/h(除非发生急性出血)。维持充足的血糖可能需要含有葡萄糖的液体,如乳酸林格氏溶液中含有2.5%至5%的葡萄糖。建议在动物麻醉期间定期监测血糖。

应使用置于食管或直肠的温度探头,提供可靠的体温指示。体温过低应尽快治疗。患宠一旦用药,体温就会开始下降。保温的方法很多。使用温控加热垫(如电阻聚合物毯)、热水瓶或热空气毯、包裹四肢、加热静脉输液和冲洗液都可能是有益的。必须特别注意避免热烧伤,尽可能使所有加热方式接近体温。呼吸道加湿器和加温器在幼年患宠中必须谨慎使用,因为它们可能会增加器械死腔。

热溶液应用于术前皮肤准备。酒精只能在手术前应用于动物身上,因为它会通过蒸发加剧热损失。

诱导前患宠升温在人类患宠中有很好的记录,并在兽医中变得越来越常见。兽医研究表明,容易出现体温过低的患宠,如幼年患宠,在诱导前20到30分钟可以通过空气加热毯而受益。预热降低了身体外周和核心之间的温度梯度,减少了通常在麻醉的第一个小时内发生的热量损失(图5)。

图5.使用空气加温毯为幼年患宠预热是有益的。图5.使用空气加温毯为幼年患宠预热是有益的。

麻醉后

与任何患宠的恢复一样,必须注意评估呼吸和循环功能是否充分,并在必要时提供支持。

体温过低的患宠在康复时会发抖,这可能会使需氧量增加高达300%。建议对寒战患宠补充氧气以维持组织氧合。对体温过低的患宠必须主动升温。

如果可能的话,除了局部阻滞外,还应全身给予适当的镇痛药物。幼年患宠因为生存本能可能不会表现出明显的疼痛迹象;因此,对疼痛的识别可能更具挑战性。不要因为动物没有表现出明显的疼痛迹象就认为它没有疼痛。阿片类镇痛药是不错的选择,但必须注意监测不良反应,如呼吸抑制。因此,与所有幼年患宠使用的药物一样,在给药时应仔细计算剂量。非甾体类抗炎药物需要大量的肝脏代谢,因此可能不是幼年患宠的最合适选择。一定要避免重复使用。

应该尽快恢复正常饮食,未断奶的幼犬或幼猫应在它们能够吮吸乳汁后尽快送回它们的母亲身边。

通过充分的准备和对幼年兽医患宠独特的生理和解剖差异的了解,麻醉医师可以为这些患宠提供极好的护理。

参考文献

Bartges J, Boynton B, Vogt AH, et al. AAHA canine life stage guidelines. JAAHA 2012;48(1):1-11.

Vogt AH, Rodan I, Brown M, et al. AAFP-AAHA: feline life stage guidelines. J Feline Med Surg 2010;12(1):43-54.

Sharma A, Ford S, Calvert J. Adaptation for life: a review of neonatal physiology. Anaesthes Intens Care Med 2011;12(3):85-90.

Holden D. Paediatric patients. In: BSAVA Manual of Canine and Feline Anaesthesia and Analgesia. Gloucester, England: British Small Animal Veterinary Association; 2007:296-302.

Grubb T, Perez Jimenez T, Pettifer G. Neonatal and geriatric patients. In: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ, et al, eds. Veterinary Anesthesia and Analgesia. 5th ed. Ames, IA: John Wiley & Sons; 2015:983-987.

Fox MW. Developmental physiology and behaviour. In: Canine Pediatrics. Springfield, IL: CC Thomas; 1966.

Fávaro da Cunha A. Neonatal, pediatric, and geriatric concerns. In: Snyder LBC, Johnson RA, eds. Canine and Feline Anesthesia and Co-existing Disease. Ames, IA: John Wiley & Sons; 2015:310-319.

Agarwal R. Neonatal anesthesia. In: Duke J, ed. Duke’s Anaesthesia Secrets. Philadelphia: Mosby Elsevier; 2006:364-380.

Sideri AI, Galatos AD, Kazakos GM, Gouletsou PG. Gastro-oesophageal reflux during anaesthesia in the kitten: comparison between use of a laryngeal mask airway or an endotracheal tube. Vet Anaesth Analg 2009;36(6):547-554.

Wright M. Pharmacologic effects of ketamine and its use in veterinary medicine. JAVMA 1982;180(12):1462-1471.

Muir W, Lerche P, Wiese A, et al. Cardiorespiratory and anesthetic effects of clinical and supraclinical doses of alfaxalone in dogs. Vet Anaesth Analg 2008;35(6):451-462.

Whittem T, Pasloske KS, Heit MC, Ranasinghe MG. The pharmacokinetics and pharmacodynamics of alfaxalone in cats after single and multiple intravenous administration of Alfaxan at clinical and supraclinical doses. J Vet Pharmacol Ther 2008;31(6):571-579.

O’Hagan B, Pasloske K, McKinnon C, et al. Clinical evaluation of alfaxalone as an anaesthetic induction agent in dogs less than 12 weeks of age. Aust Vet J 2012;90(9):346-350.

O’Hagan BJ, Pasloske K, McKinnon C, et al. Clinical evaluation of alfaxalone as an anaesthetic induction agent in cats less than 12 weeks of age. Aust Vet J 2012;90(10):395-401.

Clarke K, Trim C, Hall LW. Patient monitoring and clinical measurement. In: Veterinary Anaesthesia. 11th ed. London: Elsevier; 2014:19-63.

Read M. Physiology and prevention of perianaesthetic hypothermia. Presented at World Congress of Veterinary Anaesthesiology, Cape Town, South Africa, 2012.

Muravchick S. Preoperative assessment of the elderly patient. Anesthesiol Clin North Am 2000;18(1):71-89, vi.​​​​

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